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Kapa biosystems/KAPA Library Amplification Kits/KK2611/50 x 50 µL reactions
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Kapa biosystems/KAPA Library Amplification Kits/KK2611/50 x 50 µL reactions
品牌 / 
kapabiosystems
货号 / 
KK2611
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数    量:
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4000-520-616

Description:

Standardkit

KAPALibraryAmplificationKits

ThegoldstandardforNGSlibraryamplification.

KAPALibraryAmplificationKitscontainKAPAHiFiDNAPolymerase,anovelenzymeengineeredforultra-highfidelityandrobustnessusingKapa’sdirectedevolutiontechnologyplatform.

KAPAHiFihasbecometheenzymeofchoiceforNGSlibraryamplificationduetoitsABIlitytoamplifycomplexDNApopulationswithhighfidelity,highefficiency,decreasedPCRduplicationratesandverylowbias.*ThisresultsinlowerduplicationratesandimprovedcoverageofGC-andATrichregions,promoters,lowcomplexityandotherchallengingregionsinallNGSlibraryconstructionworkflowsrequiringlibraryamplification.

Inadditiontothestandardlibraryamplificationformulation,KAPAHiFiisavailableinauniquereal-timeformulation,forapplicationsthatdemandprecisecontroloverlibraryamplification.Auracil-tolerantvariant,KAPAHiFiUracil+isalsoavailableforthehigh-efficiency,high-fidelity,low-biasamplificationoflibrariesconstructedfrombisulfite-treatedDNA.

KAPALibraryAmplificationKitsforIllumina® platformsnowalsoincludeanoptimallyformulatedLibraryAmplificationPrimerMix.

*Dataonfile.

ForResearchUseOnly.Notforuseindiagnosticprocedures.

ProductHighlights

Achievethelowestamplificationbiasandduplicationrates

  • Loweramplificationbiasresultinimprovedrepresentationofalllibraryfragmentsandsequenceregions
  • High-efficiencyamplificationleadstofeweramplificationcyclesandlowerPCRduplicates
  • Lessadditionalnext-generationorSangersequencingneededtocompletegenomes
The first exons of many genes have a high GC content, and are therefore difficult to amplify. Regions of these exons are therefore typically underrepresented in whole exome sequence data. Pre-capture amplification with the evolved, low-bias KAPA HiFi DNA Polymerase results in significantly improved coverage of GC- and AT-rich regions, and other sequence elements that are difficult to amplify. Data courtesy of The Broad Institute. Data on file.

ImprovecoverageofGC-andAT-richregions

  • LoweramplificationbiasimprovescoverageuniformityofGC-andAT-richregions,promoters,lowcomplexityandotherchallengingregions
  • ImprovedoverallcoverageandcoverageuniformityobservedonbothIllumina andIonTorrent™ sequencingplatforms
Real-time, high fidelity amplification of multiple libraries with the KAPA Real-Time Library Amplification Kit. Twenty libraries, spanning a ~64-fold concentration range (equivalent to 6 cycles), were simultaneously amplified and terminated after 14 cycles. Fourteen of the twenty libraries fall within the targeted amplification range (the fluorescence range defined by the Real-Time Amplification Standards 1¬–3). The remaining six libraries could either be used as is, noting that they may be outside the optimal concentration range, or they could be re-amplified individually or in high- or low-concentration groups. Data on file.

Exerciseprecisecontroloverlibraryamplification

  • KAPAReal-TimeAmplificationKitsallowforlibraryamplificationtobeobservedinrealtime
  • Terminateamplificationattheoptimalpointforindividualsamples
  • Optimizelibraryamplificationparametersforhigherthroughputworkflows
Error rates of Taq DNA polymerase and polymerases typically used in NGS library amplification. The error rates of proofreading DNA polymerases such as Q5 (New England Biolabs), Phusion (Thermo Scientific) and the evolved KAPA HiFi DNA Polymerase is 50 – 100 times lower than that of Taq. The error rate of KAPA HiFi was confirmed by deep sequencing on the 454 platform, and is 1 error per 3.54 x 106 nucleotides incorporated. Data on file.

AmplifyNGSlibrarieswithindustry-leADIngfidelity

  • KAPAHiFiwasengineeredusingdirectedevolutiontohaveenhancedproofreading(3′-5′exonuclease)activity
  • Industry-leadingfidelityconfirmedby454sequencing

Applications:

Applications
  • AmplificationofIllumina libraries(DNAandRNAsequencing)
  • Real-timeamplificationoflibrariespreparedfromlowinput,ChIPDNAandotherprecioussamples
  • Pre-andpost-captureamplificationintargetedcaptureworkflows

KitSpecificationsandContents/Storage:

KitSpecificationsandContents/Storage

Kitscanbestoredforupto12months at-20˚C.

KitsincludeKAPAHiFiHotStartReadyMix(2X),aconvenientPCRmastermixcontainingKAPAHiFiHotStartDNAPolymerase,KAPAdNTPs,reactionbuffer,andMgCl2atafinalconcentrationof2.5mM.Kitswithprimersarealsoavailable.

Kitsforreal-timelibraryamplificationincludeareal-timeversionoftheKAPAHiFiHotStartReadyMix,aswellasfluorescentstandardstomonitorlibraryamplification.

Components

LAK_Component Chart

Specifications

Spec
Description
CompatIBLePlatform
IlluminaHiSeq,MiSeq,NextSeq,andGAIIx
LibraryType
DNA,RNA,andbisulfite-treatedDNA
StartingMaterial
AnyNGSlibrarythatrequiresamplification
SequencingApplications
WholeGenomeSequencingWholeExomeSequencingTargetedSequencing(custompanels)RNA-SeqChIP-SeqAmpliconSequencing
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Materials 0.1M NaHC03 pH9 DMSO NHS-Biotin (N-Hydroxysuccinimidobiotin, Sigma #H-1759) PBS Procedure Dialyze the sample against carbonate buffer. After dialysis 查看更多>
第一种方法:使用泰乐菌素(tylosin),Sigma,120多块钱泰乐菌素是一种兽用抗生素,常用在鸡、猪的食料辅料,可以防止支原体感染引起的支气管哮喘,至今尚未见有耐药菌株,是治疗支原体感染的特效药。第二种方法:M-Plasmocin:InvivoGen公司研究开发的新一代支原体抗生素M-Plasmocin能有效地 查看更多>
一 原理:IP是利用抗原蛋白质和抗体的特异性结合以及细菌蛋白质的“prorein A"特异性地结合到免疫球蛋白的FC片段的现象活用开发出来的方法。目前多用精制的prorein A预先结合固化在argarose的beads上,使之与含有抗原的溶液及抗体反应后,beads上的prorein A就能吸附抗原达到精制的目的。 查看更多>
1. 做实验要按规程,减压一定要用园底瓶,不可用锥形瓶,容易内吸爆炸,如果仅仅是回收溶剂,尚无大碍,如果是旋去溶剂得样品,萃取 查看更多>
作者:陈智勇 刘大为摘要 用分光光度计进行比色分析中,常用直线拟合确定标准曲线的方程参数,但在生物制品的生化分析中常有偏离直 查看更多>
Materials: P3X63Ag8.653 murine myeloma or YB2/0 (maintained at < 1 x 106/ml)50 w/v PEG 1500, warmed to 37° CMedium: IMDM supplemented with 20 fetal bovine s 查看更多>
These are basically Tim's procedures and have been used successfully by numerous members of our lab and by others around us. A. Checking Peptide Thiol GroupsDo 查看更多>
Preparation of SlidesLast updated: October 6, 1999Materials Qty Order info Glass microscope slides 60 Gold Seal #3010 Slide rack 2 Shandon Lipshaw #121 (800-24 查看更多>
An important part of characterizing any protein molecule is to determine its size and shape. Sedimentation and gel filtration are hydrodynamic techniques that 查看更多>
1.1. Can the NCIS Kit be used on adults?The NCIS kit is specifically packaged for five separate tissue dissociations, each containing up to twelve neonatal rat 查看更多>
8 eggs per day, day 7- day 13 cut CAM, wash in precooled PBS, in 10 ml WASH 1 (PBS, 5 mM EDTA, COMPLETE) on ice cut in pieces in petri dish on ice centrifuge 4 查看更多>
互补的核苷酸序列通过Walson-Crick碱基配对形成稳定的杂合双链分子DNA分子的过程称为杂交。杂交过程是高度特异性的,可以根据所使用的探针已知序列进行特异性的靶序列检测。  杂交的双方是所使用探针和要检测的核酸。该检测对象可以是克隆化的基因组DNA,也可以是细胞总DNA或总RNA。根据使用的方法 查看更多>
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第一次建CDNA文库,用的是Clontech的PCRcDNAsynthesisKit,通过LDPCR获得cDNA二链后割胶分级回收连接PMD-18T载体,最后PCR检测,得到的片段大部分集中在500bp左右,只有少量的大于1kb,请各位大虾帮忙看看是不是因为T载体不适合做cDNA文库还是因为质粒cDNA文库的容量问题,还是其它什么原因?多多赐教,不胜感激!
mRNA模板经反转录酶催化体外反转录cDNA步骤应该与DNA复制程类似需要原料mRNA模板四脱氧核糖核苷酸逆转录酶能量注意:获DNA片段含非编码区序列专业答).构建cDNA文库:物细胞总mRNA模板用反转录酶合互补双链cDNA接载体转入宿主建立基文库cDNA文库1、mRNA提取及其完整性确定1)总RNA提取RNA提取:APGC或NP-40或应用试剂盒提取总RNA2)mRNA离高等真核物mRNA3'端均poly(A)尾总RNA通寡聚(DT)纤维柱离mRNA或利用磁珠制备纯mRNA某些情况裂解细胞用蔗糖梯度制备mRNA-核糖体复合物作提取mRNA替换途径3)mRNA纯化①按照总mRNA进行级主要用琼脂糖凝胶电泳蔗糖密度梯度离进行级;②聚核糖体免疫纯化利用抗体纯化合目肽4)mRNA完整性确定确定mRNA完整性三种:①直接检测mRNA;②测定mRNA转译能力;③检测总mRNA指导合cDNA第链能力2、cDNA合克隆1)cDNA第链合用亲层析mRNA根据mRNA3'端poly(A)尾结构原理用12~20核苷酸oligo(dT)与纯化mRNA混合oligo(dT)与poly(A)结合作反转录酶引物反转录反应产物条RNA-DNA杂交链oligo(dT)结合mRNA3'端合全cDNA需要反转录酶mRNA端移另端种全合难达尤其mRNA链建立种随机引物合cDNA随机引物种度6~10核苷酸由4种碱基随机组DNA片段与oligo(dT)仅与mRNA3'端结合同mRNA同位点结合随机引物合产物RNA-DNA杂交体cDNA克隆载体前必须种杂交体RNA转变DNA链即形双链DNA2).双链cDNA合合cDNA第二条链两种种利用cDNA第链3'末端现发夹环特征种发夹结构反转录酶第链末端返折并且进行复制第链结合cDNA第二链提供用引物用种合双链cDNA端发夹环用单链特异S1核酸酶切S1核酸酶处理修剪cDNA顺序使cDNA丢失mRNA5'端部顺序另种用肠杆菌RNaseH进行修饰RNaseH能识别RNA-DNA杂交并其RNA切割短片段些RNA短片段仍与cDNA第链结合新合DNA所取代新合DNA存切口用DNA连接酶些切口连接起形条完整DNA链RNaseH优于S1核酸酶能获包括mRNA5'端全部或绝部更顺序cDNA3)cDNA重组载体合cDNA与载体DNA进行连接般3种:①借助于末端转移酶3'-OH端合均聚物能力双链cDNA线性化载体DNA3'-OH端别加均聚核苷酸链;②双链cDNA线性化载体DNA别用Klenow片段进行末端补平用T4DNA连接酶进行齐连接形重组体;③通粘性末端连接4).转化重组载体DNA定条件转化入肠杆菌形携带质粒菌株同重组DNA含同cDNA基整转化含自mRNA群体各种cDNA基转化群体构该mRNA全部遗传信息cDNA基文库5).目cDNA克隆鉴定用于cDNA文库筛选鉴定目cDNA主要3种:①核酸杂交②免疫杂交检测③cDNA同胞选择
附件里是我反转录的CDNA片段,过柱后,基本上去除了500bp以下的小片段。我用的是BDclontechCo的libraryconstructKit,我不是很清楚该选择哪几个管子的cDNA去装载体比较好?
DNAmark是TakaraCo的DL2000(2000,1000,750,500,200,100)。
谢谢各位用过此kit的战友指点!
反转录酶:以mRNA为模板反转录合成DNA。
限制性内切酶:酶切目的基因和载体,使其产生相同的粘性末端。
DNA连接酶:连接目的基因和载体。
正常 因为mRNA的翻译效率不同啊 而且对mRNA的检测更加灵敏 当然也就是更加不准确 WB也是各种不准 反正肯定效率不同啦
cDNA文库需要由总RNA反转录而来,cDNA文库的构建需要反转录法。反转录紧紧是一种方法,cDNA文库是一种资源。
各位大神,我想构建一个植物-马铃薯的CDNA文库,不知道构建一个植物文库要多久时间,还有技术上的困难点是什么,希望懂得伙伴不吝赐教,谢谢了
请教一下:建立CDNA文库目前方法很多,试剂盒的种类也非常繁杂。我想用固相法来建立文库,即利用磁珠的吸附特性合成。但不清楚这样的操作是否容易控制反应条件?另外,这样作出的库容量是否能达到较高?磁珠的应用对库容的影响到底大不大?不知哪位高手做过这方面的实验,烦告知!不胜感激!
真核物基组DNA十庞,其复杂程度蛋白质mRNA100倍左右,且含量重复序列采用电泳离杂交都难直接离目基其含内含等用序列染色体DNA发材料直接克隆目基主要困难.
高等物般具105种左右同基,定间阶段单细胞或体,都尽15%左右基表达,产约15000种同mRNAcDNA文库通RNA反转录由mRNA发cDNA克隆,其复杂程度要比直接基组克隆简单.
cDNA双链合成
1. Superscipt II—RT合成第一链:
1. 在一RNase-free的0.2ml PCR管中,加入
xul mRNA(大约500ng)
1ul Xho I Primer(1.4ug/ul)
(5’ GAGAGAGAGAGAGAGAGAGAACTAGTCTCGAGTTTTTTTTTTTTTTTTTT…3’)
11-x ul RNase-free water
(大于500ng mRNA 分n管(500ng/tube)合成第一链, 第一链合成完毕后将n管合成一管进行第二链合成.)
2. 混匀后,70℃反应10分钟;
3. 反应完成后,立刻将反应体系置于冰上5min;
4. 稍微离心一下,顺序加入以下试剂:
4ul 5×first strand buffer
2ul 0.1M DTT
1ul 10mM dNTP(自己配制)
5. 混匀,稍微离心反应物之后,42℃放置2分钟;
6. 反应完成,趁热加入1 ul Superscipt II—RT,混匀;
7. 42℃反应50分钟,然后70℃,15分钟灭活反转录酶.
2. cDNA第二链的合成
1. 第一链反应完成后,取2ul一链产物-20℃冰箱中保存,待电泳检测。其余的产物合并,混匀,然后顺序加入下列试剂(promega):
20ul 10×DNA Polymerase I buffer
6ul 10mM dNTP(自己配制)
xul dd H2O
1ul RNase H(2U/ul)
10ul DNA Polymerase I(10U/ul)
总体系为200ul;
2. 混匀后,16℃反应2.5小时;
3. 70℃灭活10分钟;
4. 反应完成后,得到200ul cDNA第二链反应体系,将此体系置于冰上;
5.取2ul二链产物,同保存的一链产物一起电泳鉴定。同时上1kb ladder,确定双链的大小范围。
注:一链,二链的电泳图是smear,且二链稍比一链大一些。
3. 双链cDNA末端补平
1. 在第二链反应体系中,顺序加入下列试剂(promega):
6ul 10mM dNTP
2ul T4 DNA Polymerase(8.7U/ul)
2ul BSA(10mg/ml)
2. 稍微离心混匀反应物, 37℃反应至少30分钟,然后75℃灭活10分钟;
3. 加入等体积酚/氯仿/异戊醇,剧烈振荡后,常温下13000g离心5分钟;
4. 离心后,吸取上清于另一1.5ml eppendof管中,加入等体积氯仿,上下颠倒几次混匀后,常温下13000g离心5分钟;
5. 吸取上清至另一eppendof管,加入1/10V3M NaAc(PH5.2)和2.5V预冷的无水乙醇,混匀,-20℃放置过夜以沉淀双链cDNA;
6. 第二日,将昨日沉淀物在4℃,13000g离心60分钟以充分沉淀双链cDNA;
7.离心完毕,弃上清,加入1ml 70%乙醇洗涤沉淀,常温下13000g离心5分钟;
8.离心完毕,弃上清,干燥沉淀至无乙醇气味.
注:第3,第4步可以用PCR 纯化试剂盒代替。
PCR纯化试剂盒操作流程:
1.溶液PE使用前应加入适量体积95%-100%的乙醇,混匀。
2.向200ul二链补平产物中加入5倍体积的buffer PB,混匀。
3.加入spin column中,13000rpm离心1min。
4.加入0.75ml buffer PE,13000rpm离心1min。
5.13000rpm,再离心1min。
6.将spin column放入一新的离心管中,加入50ul buffer EB,静置10min。
7.13000rpm离心2min。
8.加入30ul buffer EB,静置10min。
9.13000rpm离心2min。
10.加入1/10体积3M的NaAc,2.5倍体积无水乙醇,混匀,-20℃沉淀过夜。
4 EcoR I adaptor 加接
1. 往双链cDNA沉淀中加入9ul EcoR I adaptor(400ng/ul),4℃至少放置30分钟以充分溶解cDNA沉淀;
2. 溶解完成后,顺序加入下列试剂:
1.2ul 10×Ligase Buffer
1ul 10mM rATP
1 ul T4 DNA Ligase(4U/ul)
3. 混匀后,4℃连接3days,或者8℃过夜连接;
5 双链cDNA末端的磷酸化及Xho I酶切
1. 连接反应完成后,将反应体系70℃放置15分钟灭活T4 DNA Ligase;
2. 稍微离心使反应物集中至管底,室温下放置5分钟,然后加入下列试剂:
1ul 10×Ligase Buffer
1ul 10mM rATP
6ul dd H2O
1ul T4 PNK(10U/ul)
3. 37℃反应30分钟,然后70℃灭活15分钟;
4. 稍微离心使反应物集中至管底;
5. 室温放置5分钟;然后加入下列试剂:
4ul Xho 10×Buffer
2ul BSA
5ul ddH2O
8ul Xho I (10U/ul)
6. 37℃反应1.5小时,然后65℃灭活酶10分钟;
7. 反应完成,双链cDNA合成完毕。置于4℃准备回收。
6.胶回收cDNA
1.配制小胶数板(每个样品一板):1%琼脂糖凝胶,2ul EB/300ml 胶
2.取4℃保存样品上样,40ul/孔。
3.电泳50V;1hr
4.紫外灯下分别切下500~1kb、1.0-2.0kb及2.0-4.0kb cDNA 片段.,分别放入已做标记的1.5ml离心管中。
5.称取胶重,加入三倍体积buffer QXI(例如,100mg胶中加入300ul buffer QXI)
6.50℃ 水浴数分钟,至胶完全融化。用手指弹 QIAEX II 使重悬,每管中加入5ul QIAEXII
7.50℃ 水浴10min,每隔2min 取出颠倒混匀数次,使QIAEX II 保持悬浮
8.4℃,13000rpm,30sec。(弃上清,离心机中甩一下,吸取上清)
9.加入500ul buffer QXI,轻弹管底使QIAEX II 重悬
10. 离心并去上清(同操作8)
11. 加入500ul buffer PE,重悬QIAEX II,离心30sec,去上清
12. 再加入500ul buffer PE,重悬QIAEX II,离心30sec,弃上清,离心机中甩一下,吸去上清
13. 超净台上吹干(至无乙醇味),加入10ul elution buffer,重悬QIAEX II,静置5min,13000rpm,30sec。吸上清,冰上放置。
14. 取1ul上清上样电泳,同时做分子量标准(1kb ladder)及DNA含量标准(10ng,20ng)作对照。
15. 将收回的cDNA置于-20℃内保存,据电泳结果,取适量DNA进行连接。
注意事项:
1.胶回收前电泳槽,电泳板,梳子等都要用1%的HCl浸泡过夜。
2.胶回收时电压要稳定。 第一链的合成
oligo(dT)引导的DNA合成法:
利用真核mRNA分子所具有的poly(A)尾巴的特性,加入12-20个脱氧胸腺嘧啶核苷组成的oligo(dT)短片段,由反转录酶合成cDNA的第一链.
缺 陷:
因为逆转录酶无法到达mRNA分子的5'-末端,必须从3'-末端开始合成cDNA.对于大分子量的较长的mRNA分子而言,特别麻烦.
随机引物引导的cDNA合成法 (randomly primed cDNA synthesis) :
根据许多可能的序列,合成出6-10个核苷酸长的寡核苷酸短片段(混合物),作为合成第一链cDNA的引物.在应用这种混合引物的情况下,cDNA的合成可以从mRNA模板的许多位点同时发生,而不仅仅从3'-末端的oligo(dT)引物一处开始. 第二链的合成
第一链的合成反应完成后,得到DNA/RNA杂交分子,在DNA聚合酶的作用下,以第一链为模版,合成cDNA的第二链。 变性降解除去杂交分子中的RNA,单链cDNA的3'端能够形成发夹状的结构作为引物,在大肠杆菌聚合酶I Klenow或反转录酶的作用下,合成cDNA的第二链.
缺 点:
在以S1核酸酶切割cDNA的发夹状结构时,会导致对应于mRNA 5'端的地方的序列出现缺失和重排. S1核酸酶的纯度不够时,会偶尔破坏合成的双链cDNA分子.
自身引导法合成双链cDNA 原 理:
以第一链合成产物cDNA:mRNA杂交体作为切口平移的模板,RNA酶H在杂交体的mRNA链上造成切口和缺口,产生一系列RNA引物,在大肠杆菌DNA聚合酶I的作用下合成cDNA的第二链.
优点:a)合成cDNA的效率高
b)直接利用第一链的反应产物,不需纯化
c)避免使用S1核酸酶来切割双链cDNA
3,引物-衔接头法
网站在线客服软件回头客CRM有这些特点。
1、属性自定义
作为筛选的内容,完全自定义的属性,满足您快速查询的特殊要求,新建栏目、新增分类,通过设置属性的使用状况和显示顺序,编辑符合您企业需求的最佳属性配置。
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在进行客户分类管理时,可添加多个自定义标签,分门别类后根据客户重要性选择标签颜色。方便您的产品经理进行一对一需求分析和功能规划,针对不同类型客户进行差异化服务。
3、庞大的数据分析
回头客提供销售统计、订单统计、产品统计和员工绩效统计的四大图表,分别从销售全局、客户消费情况、产品销售情况、员工绩效四大维度全方位展示销售深度数据。
4、详细的联系记录
详细记录每一次与客户的互动,并可自行制定联系计划,查询时可按下一次计划联系时间或最近一次联系时间自选排序,保证与客户保持周期性的联系。
5、岗位层级显示
默认通过岗位层级展示相应数据,如部门主管可查看部门全部联系记录、组长可查看小组全部联系记录,层级管理,简单便捷。
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