实验方法原理 | |||||||||||
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实验材料 | 人的细胞总RNA或poly(A)+RNA 试剂、试剂盒 | 人胎盘RNase抑制剂DNaseITris·ClKClMgCl23:1(VV)苯酚氯仿乙酸钠乙醇DEPC处理的水简并锚定oligo(dT)引物组合MoMuLV逆转录酶缓冲液DTT4dNTP混合物MoMuLV逆转录酶PCR扩增缓冲液[α-33P]dATP随机十聚体TaqDNA聚合酶矿物油甲酰胺上样缓冲液糖原(无DNase) 仪器、耗材 | 65℃、95℃、80℃和100℃水浴热循环仪Whatman3MM滤纸 实验步骤 | 实验所需「材料」、「试剂」、「耗材」具体见「其他」 1.消化细胞总RNA或poly(A)+RNA中的DNA: 50ugRNA 10ul1U/ul人胎盘RNase抑制剂 1/ul10U/ul无RNase的DNaseI 5ul0.1mol/LTris·Cl,pH8.3 5ul0.5mol/LKCl 5ul15mmol/LMgCl2 加水到50ul 37℃温育30min。 2.加入50ul酚/氯仿(3:1),涡旋混勻,最高速离心2min分相。 3.转移上层到一个干净的微量离心管中,加入5ul3mol/L的乙酸铵和200ul100%乙醇。-70℃放置30min沉淀RNA。 4.高速离心10min。去除上清,用500ul70%的乙醇洗涤沉淀(沉淀的RNA)。 5.溶解RNA沉淀于20ulDEPC处理水,用分光光度计测量A260准确定量RNA的浓度。 6.用琼脂糖/甲醛凝胶电泳分析3ug用作差异显示分析的RNA,检査RNA的完整性。无DNA的RNA保存在-80℃直到做差异显示分析。 7.对于每一个RNA样品,标记4个微量离心管为G、A、T和C个管子对应一个简并锚定oligo(dT)引物。 8.把1ug无DNA的RNA(步骤5)稀释到0.1ug/ul,置于冰上。 9.用4个不同的简并锚定引物(5"-T12MN-3";T12MG、T12MA、T12MT、T12MC,M是G、A或C)配制无DNA的总RNA或poly(A)+RNA的逆转录反应: 4ul5×MoMuLV逆转录酶缓冲液(终浓度1×) 2ul0.1mol/LDTT(终浓度10mmol/L) 1.6ul250umol/L4dNTP混合物(终浓度250mmol/L) 0.2ug总RNA或0.1ugpoly(A)+RNA 2ul一个10umol/L简并锚定oligo(dT)引物(T12MN;终浓度1umol/L) DEPC处理水调整体积到19ul。 10.65℃温育5min变性mRNA的二级结构,继续37℃温育10min复性引物。 11.每管加入1ul200U/ul的MoMuLV逆转录酶,混匀,37℃温育50min。 12.95℃加热5min,灭活逆转录酶,高速离心把溶液收集到管底。把管子放在冰上马上准备PCR,或保存在-20℃以备日后使用(可以稳定保存至少6个月)。 13.为每个引物准备如下20ul的反应混合液: 10ulH2O 2ul10×扩增缓冲液(终浓度1×) 1.6ul25umol/L4dNTP混合物(终浓度2umol/L) 0.2ul[α-33P]dATP 2ul12umol/L的随机十聚体(终浓度0.2umol/L) 2ul10umol/L的简并锚定oligo(dT)引物(T12MN;终浓度1mmol/L) 2ulCDNA(12步) 0.25U5U/ulTaqDNA聚合酶 14.上下吹吸混勻,覆盖25ml矿物油。 15.在热循环仪上用如下程序扩增: 40轮: 30s94℃(变性) 2min40℃(复性) 30s72℃(延伸) 1轮: 5min72℃(延伸) 最后一步:4C(保持) 16.混合3.5ulPCR产物和2ul甲酰胺上样缓冲液,80℃加热2min。上样到6%的变性聚丙烯酰胺凝胶上。60W电泳约3h直到二甲苯青走到离底部10cm以内。 17.小心移去凝胶上的一块玻璃板。把一张Whatman3MM滤纸覆盖在凝胶上,在凝胶和滤纸之间不要留有气泡。不需要在甲醇/乙酸中固定,室温干凝胶约1h。 18.使用放射性墨水或钟头打孔器标记X射线胶片和干好的凝胶移确定它们的方向。室温曝光24~48h。 19.洗片,把凝胶片和凝胶比照,标出感兴趣的DNA条带(在不同泳道差异显示的条带)或用一支干净的铅笔或割穿凝胶片在凝胶片下作标记。 20.用刀片割出凝胶块和黏附其上的Whatman3MM滤纸,放人一个微量离心管。加入100ulH2O,室温浸泡10min。 21.盖上管子煮沸15min。 22.高速离心两分钟沉淀凝胶块和滤纸残渣。转移上清到一个干净的管子里。 23.上清中加入10ul3mol/L的乙酸钠(终浓度0.3mol/L)和5ul10mg/ml的糖原(作为载体)。加入400ul100%的乙醇,-70℃放置30min。4℃高速离心10min。 24.用500ul85%的乙醇洗涤沉淀,晾干,重新溶解于10ulH2O中。 25.在一个40ul的反应体积里再次扩增4ul洗脱的DNA。使用和步骤13~15中同样的简并描定引物和PCR条件,不同的是加入250umol/L4dNTP混合物(终浓度20umol/L)代替1.6ul25umol/L4dNTP混合物,也不加同位素。-20℃保存剩余的回收DNA以备将来扩增(可稳定数年)。 26.取每个PCR样品30ul在1.5%的琼脂糖凝胶上电泳,用0.5ug/ml的EB染色。20℃保存剩余的PCR样品(可以稳定保存数年)。 27.从琼脂糖凝胶上抽提所希望扩增的DNA条带。用它作探针进行North-era印迹分析和cDNA库的筛选。 28.亚克隆,测序鉴定余下的PCR样品。 注意事项 | 必须由受过正确使用33P同位素的人员在经NRC认证的地方进行。防止过量的照射,必须始终贯彻人员和仪器的同位素污染防范标准。 其他 | 1.材料 人的细胞总RNA或poly(A)+RNA 2.试剂 1U/ul人胎盘RNase抑制剂 10U/ulDNaseI(无RNase) 0.1mol/LTris·Cl,pH8.3 0.5mol/LKCl 15mmol/LMgCl2 3:1(V/V)苯酚/氯仿 3mol/L乙酸钠,pH5.2 100%、70%和85%的乙醇 DEPC处理的水 浓度各为10umol/L的简并锚定oligo(dT)引物组合(如Genhunter):T12MG、T12MA、T12MT,T12MC(M代表G、A或C) 5×MoMuLV逆转录酶缓冲液 0.1mol/LDTT 250umol/L和25umol/L的4dNTP混合物 200U/ul的Moloney鼠白血病病毒(MoMuLV)逆转录酶 10×PCR扩增缓冲液(使用15mmol/LMgCl2,0.1mg/ml白明凝胶;保存在-20℃) 10uCi/ul[α-33P]dATP(>2000Ci/mmol) 2umol/L随机十聚体(如GenHunter或OperonTechnologies) 5U/ulTaqDNA聚合酶 矿物油 甲酰胺上样缓冲液 10mg/ml的糖原(无DNase) 3.耗材 65℃、95℃、80℃和100℃水浴 热循环仪 Whatman3MM滤 |